SOP文件 | 微生物检验标本采集运送程序
3 职责
3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。
3.2 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。
3.3 标本运送人员负责及时送到检验科细菌室，急诊检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送到细菌室（备注：周一至周五8:00AM ~ 5:30PM、节假日8:00AM ~ 12:00 AM送细菌室，余下时间送门诊检验室）。
4 程序
4.1 采集前，采样人员根据检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作。包括核对医嘱，打印条形码，选择合适标本容器，粘贴条形码及指导病人做好采样前准备工作等。
4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请是否一致，严防差错。
4.3 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备来采集标本，注意避免自身正常菌群的污染，各标本采集技术、设备和方法参见微生物标本采集指南。
4.4 采集厌氧菌培养标本时一般情况下不要使用拭子，最好选择活检或抽吸物；厌氧菌培养标本的运输应避免接触空气，立即送检，切不可冷藏；厌氧标本采集与需氧标本采集均参见微生物标本采集指南。
4.5 收集足够量的标本，量少可能导致假期阴性结果。
4.6 在每份标本容器上贴上条形码标识，标识中包含有病人基本信息与检验项目，有时还需标明标本来源、采集部位、采集时间。
4.7 将标本放置于合适的密封容器中。
4.8 采集样品所用材料需按照废弃物处理程序处置，参见《废弃物处理程序》。
4.9 采集标本后，运送人员及时送到检验科细菌室。
4.10 标本运送人员收集标本时，需核对标本数，用硬质、密闭防泄漏的二级容器将标本安全送抵细菌室，参见微生物标本采集指南。
4.11 标本送达细菌室后，运送人员需与细菌室标本接收人员对标本进行核收登记并签名。
4.12 标本采集和运输中的生物安全防护参见《二级生物安全管理程序》。
4.13 采样人员需培训合格后方可进行采样，病人自行留取标本时，需受专业人员的指导。
4.14 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2小时。
4.15 组织标本如果在厌氧转动系统中存放，不能超过2 ~ 24小时。
4.16 志贺菌（应立即处理）、淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌和流感嗜血杆菌对环境温度敏感，因此脑脊液、生殖系统、眼或内耳标本不能冷藏。
4.17 标本采集后无论运送距离的远近都应按要求进行标本的包装和标识。
4.18 微生物标本采集指南详见下表。
微生物标本采集指南（一）
标本 类型 | 采集 | 时间 温度 转运 | 报告时间 （工作日） | 采样限制 | 注意事项 | |
原则 | 装置和 最小量 | |||||
血液 骨髓 | 1、培养瓶消毒：用75%乙醇消毒橡胶塞30s 2、静脉穿刺消毒：严格按皮肤消毒步骤操作（酒精-碘酊-酒精） 3、血液培养需特别注意消毒，因许多微生物、尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染 4、采血时机：在寒战出现时或发热初期采集血培养最佳 | 血培养瓶有两种规格，采血量不一样。 成人瓶： 8 ~ 10ml/瓶 小儿瓶： 3 ~ 5ml/瓶 | ≤2h 常温 禁止冷藏 | 阴性：5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 | 建议从不同部位各采1瓶，共2瓶同时送检。 | 病人信息标识不可覆盖血培养瓶的条形码；标本采集后立即送检，如不能立即送检，应置于室温，禁止放置冰箱 |
脑 脊 液 | 同血液、骨髓 | 同血液、骨髓 | ≤1h 常温 禁止冷藏 | 阴性：3 ~ 5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 | 无 | 病人信息标识不可覆盖血培养瓶的条形码；标本采集后立即送检，如不能立即送检，应置于室温，禁止放置冰箱 |
微生物标本采集指南（二）
标本 类型 | 采集 | 时间 温度 转动 | 报告时间 （工作日） | 采样限制 | 说明 | |
原则 | 装置和 最小量 | |||||
脓肿 伤口 | 1、采集前用无菌盐水或75%酒精清创，以去除表面细菌。 2、用无菌针穿刺法抽吸深部脓液，或用无菌拭子从伤口深处采集渗出物。 | 无菌容器 ≥1ml | 常温 ≤1h | 阴性：3d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 | 1/d# | 组织或抽吸物标本优于拭子标本 |
组织 | 1、用无菌容器呈送 2、小样本应滴加几滴无菌盐水保持湿润 3、不能使组织干涸 | 无菌容器，需要加一些盐水 | 无 | 呈送组织的量尽可能多，不要呈送表面简单摩擦的拭子 | ||
静脉 导管 | 1、用75%酒精消毒导管周围的皮肤 2、将导管未端约5㎝移入无菌管 | 无菌试管 | 1/d# | |||
穿刺液、心包液、胸腹水、关节液、等 | 1、注意彻底消毒，因许多微生物，尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染 2、尽量留取多量标本 | 同血液、骨髓 | 无 | |||
引流液 | 1、用75%酒精消毒导管采集部分 2、用注射器从引流管无菌采集2 ~ 3ml | 无菌容器 ≥1ml | 常温 ≤2h | 阴性：2d 阳性：及时发送报告 | 标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易孳生细菌 |
1/d#表示一天中仅需送检1次，无需多次重复送检相同标本。
微生物标本采集指南（三）
标本 类型 | 采集 | 时间 温度 转动 | 报告时间 （工作日） | 采样限制 | 说明 | |
原则 | 装置和 最小量 | |||||
眼结膜 | 1、用无菌盐水预湿的拭子绕每一个结膜取标本 2、采集完即接种培养基 | 无菌试管 | 常温（需要时保温）， 立即送检 | 阴性：3d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 | 无 | 1、采集时，需避免感染蔓延至眼部临近区域 2、需标明左眼、右眼的标本 |
肺泡灌洗液、气管抽吸物、痰、等 | 1、用温开水清洗或漱口去除口腔表面菌 2、指导病人从肺深部咳出痰液，采集到无菌容器内 | 无菌容器 ≥1ml | ≤2h 常温 | 阴性：2d 阳性：及时发送报告 | 1/d# | 对不能咳痰的病人，应经抽吸获得标本，最好的标本应≤10个鳞状细胞/LPF |
鼻 | 用被无菌盐水湿润的拭子插入鼻孔约2㎝，对鼻黏膜用力旋转 | 无菌试管 | ||||
咽 | 1、用无菌盐水湿润的拭子经鼻轻轻插入鼻咽后部 2、慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物 | |||||
喉 | 1、用压舌板压舌 2、用无菌盐水湿润的试子从咽后、扁桃体和发炎区采样 | 喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人 |
1/d#表示一天中仅需送检1次，无需多次重复送检相同标本。
微生物标本采集指南（四）
标本 类型 | 采集 | 时间 温度 转动 | 报告时间 （工作日） | 采样限制 | 说明 | |
原则 | 装置和 最小量 | |||||
粪便 | 1、取有脓血、黏液部分的粪便1 ~ 3g 2、液体粪便取1 ~ 3ml | 无菌 容器 | 常温 ≤2h | 阴性：2d 阳性：及时发出 | 1/d# | 1、住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的病人，不做常规粪便培养 |
直肠拭子 | 1、小心插入拭子超越肛门括约肌，轻轻旋转拭子，在肛门隐窝取样 2、用于检测病原的拭子应能见到粪便 | 无菌 试管 | ||||
褥疮溃疡 | 1、一般不选择拭子标本 2、无菌盐水清洗表面 3、如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集损伤底部 | 1、由于褥疮溃疡拭子提供不了什么临床信息，一般选择组织活检或针头抽吸标本 | ||||
中 段 尿 | 1、在未使用抗生素之前采集标本，注意避免消毒剂污染标本 2、最好留取早晨清洁中段尿，采集前先用中性肥皂和水清洁外阴及尿道口周围 留取时将前段尿排去，截留中段尿5 ~ 10ml病人睡前少饮水 | 无菌容器≥3ml | ||||
导尿 | 1、用75%酒精消毒导管采集部分 2、用注射器从导尿管无菌采集5 ~ 10ml | 不能直接从导尿袋放出，因尿液在袋中潴留时间太长，容易孳生细菌 |
1/d#表示一天中仅需送检1次，无需多次重复送检相同标本。
涂 片抗 酸 染 色
| 痰 | 量多为宜 | 无菌容器 | 无 | 1h出报告 | 至少连续送3d，每日1次 |
尿（24h尿沉淀或12h全夜尿沉淀） | 10ml | 无菌管 | 留取24h尿或12h全夜尿于洁净容器中，必须静止2h后，弃上清液，收集沉渣约10ml于无菌容器送检 | |||
1 ~ 2ml | ||||||
体液（胸腹水、关节液等） | 5 ~ 10ml | |||||
胃冲洗液或灌洗液 | 5 ~ 10ml | 无菌容器 | ||||
脓液、伤口、抽取液 | 1 ~ 5ml | 无菌容器 | ||||
支气管刷片 | 载玻片 |
编制人 | 审核人 | 批准人 | |
签名 | |||
日期 |